ELISA 안정성 ≤± 0.003Abs 미코톡신 검사기 ST-2000A 파장 범위 400-900nm

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x광원 | DC12V 22W는 할로겐 램프를 수입했습니다 | 파장 범위 | 400-900nm |
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필터 | 405, 450, 492, 630nm 표준, 기타 파장 선택 가능 | 읽기 범위 | 0~4.000Abs |
결의 | 0.001Abs | 지시 오차 | ≤±0.01Abs |
안정성 | ≤±0.003Abs | 반복 가능성 | ≤ 0.3% |
크기 | 400mm×260mm×200mm | ||
강조하다 | 미코톡신 검사기,미코톡신 분석기,미코톡신 검사기 ELISA |
ST-2000A 미코톡신 검사기
ST-2000A 미코톡신 분석기는 아플라톡신 및 효소 결합 면역 흡수 검사에 필요한 분석 도구입니다.즉 효소 결합 면역 흡수 검사 (ELISA), 이 도구와 B1 키트로 구성됩니다.제한적이고 정량적인 방법으로 표본에서 아플라톡신 B1 및 다른 미코톡신의 함량을 결정하는 데 사용할 수 있는 것 (다른 키트와 장착된 경우), 다른 독소를 검출 할 수 있습니다.) 그것은 식품, 사료, 기름, 유제품, 약물, 음료, 와인 및 기타 제품에 있는 아플라톡신 B1 및 다른 미코 독소를 검출하는 데 널리 사용됩니다.
성능 특성:
1디스플레이 동작: 컬러 LCD 화면, 비디오 폰 배포판, 전체 게시판 정보 표시, 터치 화면 작동
2진동 판 기능: 레벨 3 진동 판 속도, 0-255 초 시간 조절
3워크스테이션: 전문 효소 마커 소프트웨어는 500개의 프로그램 그룹, 100000개의 샘플 결과를 저장할 수 있으며 흡수량, 선형 방정식,로가리듬 방정식, 제곱 방정식, 큐브 방정식, 흡수 비율-농도 로가리듬 방정식, 스플라인 함수, 억제율 등
기술 매개 변수:
광원: DC12V 22W 수입 하로겐 램프
파장 범위: 400~900nm
필터:405, 450, 492, 630nm 표준, 다른 파장 선택
판독 범위:0~4000Abs
결의:0.001Abs
표시 오류:≤±0.01Abs
안정성:≤±0.003Abs
반복성: ≤ 0.3%
크기: 400mm × 260mm × 200mm
광원 | DC12V 22W 수입 할로겐 램프 |
파장 범위 | 400~999nm |
스펙트럼 필터 | 405, 450, 492, 630nm 및 기타 정규 파장 |
측정 범위 | 0.000-4000Abs |
반복 가능성 | CV≤0.3% |
안정성 | 유동 ≤±0.003Abs |
결의 | 0.001Abs |
흡수량 표시 오류 | ≤±0.01Abs |
크기 | 400mm × 260mm × 200mm |
1 원칙 및 적용
이 키트는 곡물, 사료 및 다른 샘플에서 아플라토킨 B1 (AFB1) 을 검출하기 위해 간접 경쟁 ELISA 방법을 사용합니다. 키트는 결합 항원으로 미리 코팅 된 효소로 표시 된 판으로 구성됩니다.호박 효소 표시기, 항체, 표준 및 다른 일치 반응 물질. 테스트 동안 표준 또는 샘플 용액을 추가합니다.표본에 있는 아플라톡신 B1과 효소 판은 아플라톡신 B1 항체를 얻기 위해 결합 항원으로 미리 코팅됩니다.. 효소 마커를 추가 한 후 색을 개발하기 위해 TMB 기판을 사용하십시오. 샘플 흡수 값은 샘플에 포함 된 아플라톡신 B1의 함량과 부정적으로 상관됩니다.표본에 남아있는 아플라톡신 B1의 양은 표준 곡선과 비교하여 얻을 수 있습니다..
2 기술 지표
2.1 키트 민감도:00.03ppb (ng/ml)
2.2 반응 모드:25 °C, 30분~15분
2.3 낮은 탐지범위:
곡물 0.15ppb
포뮬레이션 식품 0.3 ppb
식용 기름, 땅콩 기름 0.6ppb
소야 소스, 밀 및 다른 식품 0.3 ppb
맥주 0.3 ppb
와인, 소야 소스, 식초 0.15ppb
2.4 교차 반응 속도:
아플라톡신 B1 100%
2.5 샘플 복원률:
곡물 및 포뮬러 사료 85% ± 15%
땅콩 82 ± 15%
식용유 85 ± 15%
소야 소스, 밀 및 다른 사료 83 ± 15%
맥주 84 ± 15%
와인, 소야 소스, 식초... 87 ± 15%
3 키트 구성
효소 표시판 96 구멍
표준 용액 (검은 덮개): 각 1ml
0ppb,00.03ppb,00.06ppb,00.12ppb,00.24ppb,0.48ppb
고 표준 용액: 100ppb 1ml
효소 표시기 (붉은 모자)
항체 작동 용액 (푸른 캡) 5.5ml
서브스트라트 용액 A (백색 캡) 6ml
서브스트라트 액체 B (검은 덮개) 6ml
종식 용액 (노란색 캡) 6ml
20X 농축 세탁 용액 (백색 덮개) 40ml
사용 설명서
4 필요한 장비 및 반응기
4.1 장비: 아플라토킨 검사기, 프린터, 동화기, 질소 건조장치, 오시레이터, 원심분리기, 점진 피펫, 균형 (감각도 0.01g)
4.2 마이크로 파이펫:단 채널 20μl~200μl, 100μl~1000μl, 다채널 300μl
4.3 반응물질: 메탄올, n-헥산, 트리클로로메탄 또는 디클로로메탄
5 표본 전처리
5.1 샘플 처리를 위한 지침:
실험 장비는 깨끗해야 하며, 오염과 실험 결과의 간섭을 피하기 위해 일회용 흡수머리를 사용해야 한다.
5.2 용액 준비:
솔루션 1: 샘플 추출물
70%의 메탄올, 즉 V 메탄올: V 디온화된 물=7:3.
5.3 샘플 전처리 단계:
5.3.1 곡물 가공 방법
1) 분쇄된 표본의 2g를 50ml의 원심분리관으로 무게를 가하고, 5ml의 표본 추출 용액을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방온에서 4000rpm/10분 분리 중심
2) 0.5ml의 초상수, 0.5ml의 탈이온화 물, 그리고 잘 섞어
3) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 5 낮은 검출 한계: 0.15ppb
5.3.2 옥수수 껍질 및 밀청과 같은 강한 수분 흡수력을 가진 샘플에 대한 처리 방법
1) 분쇄된 표본의 2g를 50ml의 원심분리관으로 가량하고, 20ml의 표본 추출 용액을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방온에서 4000rpm/10분 분리 중심
2) 0.5ml의 초산화물을 가져와 0.5ml의 탈이온화 물을 첨가하고 잘 섞는다. (극히 높은 독소 함량을 가진 표본은 35%의 메탄올로 희석하여 검사할 수 있다. 예를 들어, 0.혼합 용액의 1ml 2) 및 0.9ml의 35% 메탄올을 혼합합니다. 최종 샘플 희석 비율은 200이며 검출 한도는 6ppb입니다.)
3) 50μL 분석을 취합니다.
표본 희석 비율:20 낮은 탐지 한계:0.6ppb
참고:시험에서 독소의 분포가 불균형하기 때문에 2g를 검사하기 전에 여러 점에서 샘플을 채취하고 완전히 혼합해야합니다.
5.3.3 포뮬러 사료의 처리 방법
1) 분쇄된 표본의 2g를 50ml의 원심분리 튜브에 가량하고, 10ml의 표본 추출 용액을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방온에서 4000rpm/10분 분리 중심
2) 0.5ml의 초상수, 0.5ml의 탈이온화 물, 그리고 잘 섞어
3) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 10 낮은 검출 한계: 0.3ppb
5.3.4 식용유, 땅콩 및 지방이 풍부한 사료 처리 방법
1) 분쇄된 표본의 2g를 50ml의 원심분리관으로 무게를 가하고, 8ml의 n-헥산과 10ml의 표본 추출 용액을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방온에서 4000rpm/10분 분리 중심
2) 상부 액체를 제거하고, 하부 액체의 0.5ml를 채취하고, 0.5ml의 이온화 된 물을 첨가하고, 잘 섞고, 혼합 액체의 0.5ml를 채취하고, 35%의 메탄올의 0.5ml을 첨가하고, 30초 동안 흔들고,
3) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 20 낮은 검출 한계: 0.6ppb
5.3.5 소스, 밀, 쿠키, 베이커리 등의 식품이나 향신료, 그리고 포드 농도와 같은 사료 가공 방법
1) 분쇄된 표본의 2g를 50ml의 원심분리 튜브에 가량하고, 10ml의 표본 추출 용액을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방온에서 4000rpm/10분 분리 중심
2) 2ml의 수퍼나텐트, 4ml의 트리클로로 메탄 (또는 디클로 메탄) 을 첨가하고, 5분 동안 흔들고, 방 온도에서 4000rpm/10분 분리 센터
3) 상부 액체를 다른 용기에 옮기고, 하부 액체를 대기 상태로 두고, 상부 액체에 또 다른 4ml의 클로로포름 (또는 디클로로메탄) 을 첨가하고, 완전히 흔들고 5분 동안 섞습니다.방온은 10분 동안 4000rpm/분리 센터;
4) 상부 액체를 제거하고, 하부 액체를 두 번 섞고 완전히 섞습니다.
5) 결합 된 하부 액체의 2ml를 가져다가 50-60 °C 질소 아래에서 건조하게 부어줍니다.
6) 0.5ml의 샘플 추출물을 첨가하여 건조한 물질을 완전히 녹이고, 그 다음 0.5ml의 이온화 된 물을 첨가하여 혼합합니다.
7) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 10 낮은 검출 한계: 0.3ppb
5.3.6 맥주 가공 방법
1) 맥주를 완전히 섞어 (CO2를 제거), 맥주의 2ml 샘플을 채취하고, 1ml의 증류수를 첨가하고, 7ml의 메탄올을 첨가하고, 5분 동안 흔들고,
2) 혼합된 샘플 용액의 0.5ml를 채취하고 잘 섞기 위해 이온화 된 물의 0.5ml을 첨가합니다.
3) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 10 낮은 검출 한계: 0.3ppb
5.3.7 와인, 소야 소스 및 식초의 처리 방법
1) 샘플 2ml를 가져, 증류 물 2ml를 더하고, 트리클로로 메탄 (또는 디클로 메탄) 10ml를 더하고, 5분 동안 흔들고, 방 온도에서 4000rpm/10 분 분리 센터;
2) 하층 액체의 1ml를 가져다가 50-60 °C 질소 아래에서 건조하게 부풀립니다.
3) 0.5ml의 샘플 추출물을 첨가하여 건조물을 완전히 녹이고, 0.5ml의 비이온화된 물을 첨가하여 잘 섞습니다.
5) 50μL 분석을 취합니다.
샘플 희석 비율: 5 낮은 검출 한계: 0.15ppb
6 단계 ELISA
필요한 반응제를 4°C의 냉장고에서 꺼내 30분 이상 실내 온도에서 보관한다.세탁 용액이 냉장 보관 될 때 완전히 녹기 위해 방 온도에 복원해야하는 결정이있을 수 있습니다.사용 전에 각 액체 반응 물질은 흔들어야 합니다. 필요한 수의 미세 포러스 판과 프레임을 꺼내서 사용하지 않은 미세 포러스 판을 자폐 봉인 가방에 넣고 2-8 °C에서 보관합니다.
실험 전에, 20 × 농축 된 세탁 용액은 20 배로 작동 세탁 용액으로 희석됩니다.
6.1 번호: 샘플과 표준에 해당하는 구멍을 순서대로 번호로 지정하고, 각 샘플과 표준에 대해 두 개의 평행 구멍을 만들고, 표준 구멍과 샘플 구멍의 위치를 기록합니다..
6.2 표본 추가 반응: 각 우물에 표준 또는 표본 50μl/well을 첨가하고, 그 다음 효소 표시기 50μl/well을 첨가하고, 그 다음 항체 작업 용액 50μl/well을 첨가합니다.표지판을 덮기판 막으로 봉인합니다.5초 동안 부드럽게 흔들고 섞고 25°C에서 30분 동안 반응합니다.
6.3 세탁: 덮개판 막을 조심스럽게 제거하고 구멍에 있는 액체를 건조하고 구멍을 30초 간격으로 5번씩 250μl/홀의 작동 세탁 용액으로 완전히 세탁합니다.그리고 흡수 종이로 건조 탭 (패트 후 제거되지 않는 거품은 깨끗한 총 머리로 뚫 수 있습니다).
6.4 색상 개발: 각 구멍에 50μl의 기질 용액 A와 50μl의 기질 용액 B를 첨가하고, 5초 동안 부드럽게 흔들고 잘 섞고, 25°C에서 15분 동안 어두운 곳에서 색상을 개발한다.
6.5 종료: 각 구멍에 50μl의 종료 용액을 첨가하고, 부드럽게 흔들고, 반응을 종료하기 위해 잘 섞는다.
6.6 흡수 값 측정: 450nm에서 각 구멍의 흡수 값을 측정하기 위해 아플라토킨 테스터를 사용하십시오 (450/630 nm의 이중 파장 권장됩니다).결정은 반응이 종료된 후 10분 이내에 완료되어야 합니다.
6.7 ST-2000A 자동 아플라톡신 검사기는 자동으로 결정을 완료하고 자동으로 결과를 생성합니다.